Reprogramação metabólica rápida mediada pelo AMP

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Sep 29, 2023

Reprogramação metabólica rápida mediada pelo AMP

Nature Communications volume 14, número do artigo: 422 (2023) Citar este artigo 2062 Acessos 17 Detalhes da Altmetric Metrics O patógeno onipresente Toxoplasma gondii tem um estilo de vida complexo com

Nature Communications volume 14, número do artigo: 422 (2023) Citar este artigo

2062 Acessos

17 Altmétrico

Detalhes das métricas

O patógeno onipresente Toxoplasma gondii tem um estilo de vida complexo com diferentes atividades metabólicas em diferentes estágios que estão intimamente ligados aos ambientes parasitários. Aqui identificamos o regulador eucariótico da homeostase celular proteína quinase ativada por AMP (AMPK) no Toxoplasma e descobrimos seu papel na programação metabólica durante o ciclo lítico do parasita. A subunidade catalítica AMPKα é rapidamente fosforilada após a liberação de parasitas intracelulares para ambientes extracelulares, conduzindo o catabolismo produtor de energia para potencializar a motilidade do parasita e a invasão nas células hospedeiras. Uma vez dentro das células hospedeiras, a fosforilação da AMPKα é reduzida ao nível basal para promover um equilíbrio entre a produção de energia e a síntese de biomassa, permitindo a replicação robusta do parasita. A depleção de AMPKγ elimina a fosforilação de AMPKα e suprime o crescimento do parasita, que pode ser parcialmente resgatado pela superexpressão de AMPKα de tipo selvagem, mas não dos mutantes de fosforilação. Assim, através da reprogramação cíclica pela AMPK, as necessidades metabólicas dos parasitas em cada fase são satisfeitas e o ciclo lítico progride de forma robusta.

As mudanças nas condições ambientais são desafios com os quais todos os organismos vivos devem lidar. Devido ao estilo de vida único, os organismos parasitas são particularmente proficientes em responder e adaptar-se às mudanças ambientais. O Toxoplasma gondii, um protozoário onipresente que infecta um terço da população humana mundial e numerosos animais, é capaz de crescer e sobreviver em hospedeiros e condições ambientais extremamente diversas1,2. Este parasita tem um ciclo de vida complexo, alternando entre múltiplas fases que são fundamentais para a sua patogénese e transmissão. Durante a infecção aguda de hospedeiros intermediários, os parasitas proliferam rapidamente como taquizoítos, responsáveis ​​pelos sintomas clínicos da toxoplasmose3. Os taquizoítos invadem ativamente as células hospedeiras, replicam-se nelas e depois lisam-nas para iniciar novas invasões quando o número de parasitas atinge uma determinada quantidade. Sob condições ideais, os parasitas crescem continuamente como taquizoítos e repetem o ciclo lítico. No entanto, sob condições de estresse ou de fome, os taquizoítos podem se converter em uma forma menos ativa chamada bradizoítos, que ficam encerrados em cistos teciduais e mantêm uma infecção crônica ao longo da vida nos hospedeiros1,2,4.

Os parasitas do Toxoplasma têm diferentes atividades metabólicas em diferentes estágios. A maioria das enzimas glicolíticas possui duas isoformas, muitas das quais exibem expressão específica de estágio5,6, indicando requisitos distintos de atividade glicolítica em diferentes estágios. Da mesma forma, bradizoítos e oocistos acumulam grandes quantidades de amilopectina, que é pouco observada nos taquizoítos7,8,9. O significado fisiológico e os mecanismos reguladores subjacentes para esse metabolismo específico do estágio são amplamente desconhecidos. O ciclo lítico dos taquizoítos contém dois estágios, um curto estágio extracelular, quando os parasitas recém-egressos usam a motilidade deslizante para encontrar e invadir as células hospedeiras, e um estágio intracelular, quando os parasitas invadidos proliferam dentro das células hospedeiras. Do ponto de vista metabólico, o objetivo principal dos taquizoítos extracelulares é gerar energia suficiente para alimentar uma invasão rápida e eficiente, enquanto os parasitas intracelulares necessitam de produção equilibrada de energia e síntese de macromoléculas para se replicarem. Observou-se que a enzima glicolítica frutose-bifosfato aldolase se relocaliza do citoplasma para a periferia do parasita assim que os parasitas são liberados das células hospedeiras10. Como o complexo motor que impulsiona a motilidade do parasita está abaixo da membrana do parasita, a relocalização das enzimas glicolíticas foi considerada uma forma de gerar energia rapidamente nos locais onde ela é necessária11. Além disso, tratando taquizoítos com glicose marcada com 13C para monitorar o fluxo de carbono derivado de glicose, foi demonstrado que, embora o 13C pudesse ser eficientemente incorporado em macromoléculas como ácidos graxos em parasitas intracelulares, ele mal foi incorporado nessas moléculas em parasitas extracelulares . Estas observações sugerem que, embora a fase extracelular seja muito breve, durando de segundos a minutos, o seu metabolismo é fundamentalmente diferente do dos parasitas intracelulares. Como essa transição metabólica de curto prazo é regulada e alcançada é completamente desconhecida.

1.5 fold (p < 0.05), 24 of which were decreased and 23 were increased after AMPKγ depletion (Fig. S10, Supplementary data 3). On the other hand, the abundance of 325 phospho-peptides had an abundance change over 1.5 fold after AMPKγ depletion. After adjustments with the protein level changes (to rule out the change of phospho-peptides abundance was caused by changes in protein level), the abundance of 285 phospho-peptides corresponding to 170 proteins was changed >1.5 fold (p < 0.05) upon AMPKγ depletion (Supplementary data 4). More than 40% (74/170 = 43.5%) of these proteins are hypothetical proteins with unknown functions. Besides those, a large number of proteins with metabolic roles, including enzymes, transporters and regulators, were differentially phosphorylated in the AMPKγ+ versus AMPKγ- parasites. Notably, the glycolytic enzymes pyruvate kinase 1 (PYK1) and fructose-1,6-bisphosphate aldolase (ALD), as well as the major glucose importer glucose transporter 1 (GT1) all contained two or more phospho-peptides that had abundance difference between AMPKγ expressing and depleted parasites (Fig. 7a). Other proteins involved in sugar breakdown or energy metabolism, including 6-phosphogluconate dehydrogenase (6PGD), acetyl-coenzyme A synthetase (ACS) and pyruvate dehydrogenase kinase also showed changes in phosphorylation at specific serine residues upon AMPKγ degradation (Fig. 7a, Supplementary data 4). Similarly, a number of proteins and enzymes involved in anabolism such as lipid and protein synthesis also displayed phosphorylation changes after AMPKγ depletion (Fig. 7b, Supplementary data 4). Particularly, the phosphorylation of three eukaryotic initiation factors (eIF2B, eIF4A and eIF4G) that control the initiation of protein translation was reduced upon AMPKγ degradation (Fig. 7b), which is consistent with the impaired nascent protein synthesis of AMPKγ depleted parasites (Fig. 5d)./p> 1.5) changed after TgAMPKγ depletion. These include many metabolic enzymes and regulators, such as pyruvate kinase 1, fructose-1,6-bisphosphate aldolase, glucose transporter GT1 and pyruvate dehydrogenase kinase that are involved in sugar breakdown and ATP production45,46,47, as well as a number of eukaryotic initiation factors and CDP-alcohol phosphatidyltransferase that are involved in the synthesis of proteins and phospholipids. Many of these proteins were also identified in the co-IP experiments as potential interaction proteins with AMPK. These proteins are possible targets of AMPK in Toxoplasma. Further studies are needed to dissect how exactly they are regulated by AMPK and the physiological significance of such regulation. On the other hand, when some of the differentially phosphorylated proteins listed in Fig. 7 (such as GT1, ALD, PYK1 and ACS) were analyzed in detail to see whether the residues potentially phosphorylated by TgAMPK were conserved among other organisms. Interestingly, while orthologs of these proteins are present in model eukaryotes from yeasts to fruit flies and humans, the phosphorylated residues within them are either not conserved or do not have evidence of AMPK-dependent phosphorylation. These results suggest that either the proteins analyzed are not direct substrates of TgAMPKα, but other kinases whose activities are influenced by TgAMPKα, or the detailed mechanisms by which Toxoplasma AMPK regulates parasite metabolism are different from that of other eukaryotes./p> 10,000 parasites being analyzed for each sample. Each strain and condition were tested three times independently./p> 0.05), phosphorylation sites with log2 (phospho fold-change) ≥ 0.58 and p-value ≤ 0.05 were considered as differentially phosphorylated./p>